overlap pcr（PCR 的时候，两段引物脱离后那5’端不就缺了一块了么怎么办那overlapPCR到底怎么通过设计引物实现）
本文目录
- PCR 的时候，两段引物脱离后那5’端不就缺了一块了么怎么办那overlapPCR到底怎么通过设计引物实现
- 现代人工 DNA 合成中，最有效率的方法是什么
- 两个PCR片段的overlap PCR的问题！
- overlap pcr程序怎么设定
PCR 的时候，两段引物脱离后那5’端不就缺了一块了么怎么办那overlapPCR到底怎么通过设计引物实现
因为Overlap PCR中间那个引物是互补的，所以第一轮的两段PCR片段可以通过那段互补序列粘在一起。把第一轮的两段PCR产物混在一起，变性退火后有三种组合：原来的两段PCR片段，混搭在一起的PCR片段，只有后面一条可以作为第二轮的模板。
现代人工 DNA 合成中，最有效率的方法是什么
说到最有效率，可以说是把序列发给相应基因合成公司，让公司帮你做了。但前提是你的实验室比较有钱（如果序列长的话），记得上学期分子生物学的老师说，公司是按碱基对的数目收费，做的碱基对越多，价格也就越高。（好像是按多少到多少bp是一个价格档次）。如何获取目的基因（DNA）。1.反向转录法。以目的基因mRNA为模板，设计上下游的引物，加入原料（dNTP），借助反转录酶，依据碱基互补配对的原则获得cDNA，再用DNA聚合酶合成双链DNA。2.人工合成首先要通过化学合成的方法合成一些寡核苷酸片段，相邻寡核苷酸片段之前包含互补的碱基；然后通过overlap PCR，使寡核苷酸通过互补碱基退火后结合在一起，才能扩增出目的DNA。 这是比较标准的DNA合成方法，一般公司合成大部分DNA序列的原理都是这样。但结构复杂序列庞大的DNA，就要用其它方法合成了。
两个PCR片段的overlap PCR的问题！
Overlap PCR开始几个循环模板本来就是当引物使用的，所以模板可以多加，1和2都加到100ng左右。你没有告诉我1b(2a)的Tm，Overlap的前几个循环要考虑两个模板互补的Tm。你的退火温度太低了，特异性不够强（除非你的Taq酶对退火温度有特殊要求，这个我不知道）。我的建议：前10个循环，用1a，1b，2b中最低的Tm做退火温度，适当延长退火时间。后25个循环用1a，2b中最低的Tm做退火温度，正常退火时间（和你Taq酶的要求有关）。你模板链长度不小，不要怕多加模板。
overlap pcr程序怎么设定
因为不清楚你所扩增的全长片断、以及Overlap过程中要搭在一起的两个片断各是多长，所以无法提供非常具体的意见。谈一点我的经验，供参考。overlap能成功，要点是overlap的部分能保证有效的退火（形象地说，能牢固地“粘”在一块）。所以overlap的部分要有一定长度（你的试验中25bp的重叠区应该够长），并且注意这部分的GC含量，以便使这部分（重叠的25bp）有一个合适的Tm值（例如65度），而且你使用的PCR循环所用的退火温度应该低于此温度——否则overlap的部分可能“粘”不到一起。另外一点是要意识到overlap的前后两段核酸单链有可能形成一定的空间结构！尤其是PCR退火温度较低、降温速度较快时更增加这种情况的几率。前后两段越长越容易形成某种空间结构。而这种空间结构可能会对overlap区的退火造成影响。 当然，overlap区本身也有形成某种空间结构的可能（例如发夹结构），但这可以通过软件设计（如引物设计软件）来避免。得不到全长片断，我认为首先要考虑overlap区没有成功退火。所以建议你使用TouchDown PCR试试。TouchDownPCR方法在分子克隆上有介绍。这种PCR使用一个较高的退火温度，循环几周（如三周）后降一度，然后在此温度上再循环几周，以此类推。通常最高和最低退火温度间可相差十度。Touch Down PCR有利于解决空间结构影响overlap区退火的问题，增加扩增成功的机会。其他的可尝试的地方，也可以试试加用一些变型剂，如甲酰胺、DMSO等。也可同Touch Down PCR配合使用。但建议先单纯试试TouchDown PCR。
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